Микрофлора полости носа у больных с аденоидитом: Микробиологическое исследование полости носа провели 95 пациентам с

Содержание
  1. Микрофлора полости носа у больных с аденоидитом: Микробиологическое исследование полости носа провели 95 пациентам с
  2. Состав микрофлоры слизистой оболочки носа при бактериальных
  3. Мазок из зева, носа, горла норма, расшифровка – Частная детская поликлиника в Магнитогорске
  4. Микрофлора носоглотки
  5. Подготовка к анализу
  6. Взятие материала
  7. Микроскопическое исследование
  8. Посев исследуемого материала
  9. Результат исследования
  10. : о мазке и стафилококке в нем, доктор Комаровский
  11. Зачем проводят мазки из носа и зева, выявление инфекции и аллергии, определение возбудителя и методов его лечения
  12. Когда показаны мазки из носа и глотки?
  13. Какие варианты анализов возможны?
  14. Микробные сообщества в норме и при патологиях
  15. Как подготовить ребенка к забору мазков?
  16. Методика забора мазков у детей: помощь родителей
  17. Проведение микроскопического анализа
  18. Посевы мазков и их результаты
  19. Расшифровка мазка из зева, носа, горла

Микрофлора полости носа у больных с аденоидитом: Микробиологическое исследование полости носа провели 95 пациентам с

Микрофлора полости носа у больных с аденоидитом: Микробиологическое исследование полости носа провели 95 пациентам с

Микробиологическое исследование полости носа провели 95 пациентам с АР и 83 больным с аденоидитом без атопии Исследование микробиоценоза назальной полости у больных проводили совместно с сотрудниками лаборатории условно – патогенных микроорганизмов НИИВС им. И.И. Мечникова РАМН (зав. лаб. – проф. А.П. Батуро) по методике, описанной в справочнике “Лабораторные методы исследования* в клинике” под редакцией В .В Меньшикова (78) и модифицированной А.П. Батуро и соавторами.

В таблице 13 представлена частота встречаемости различных микроорганизмов, выявленных при обследовании. Как видно, наиболее частыми представителями микрофлоры* полости носа в обследованных группах были S. aureus, S. epidermidis, Corynobacterii spp. Были определены достоверные различия в различных группах по частоте выявления именно этих видов.

Золотистый стафилококк выделяли в 2 раза чаще, а коринобактерии в 3 раза чаще у больных с аллергией. Для пациентов с аденоидитом, без атопии наиболее характерным представителем микрофлоры оказался эпидермальный* стафилококк, который часто выделяли в ассоциации г с золотистым стафилококком. У пациентов с АР S.

aureus; как правило; выделяли в монокультуре.

Наиболее тяжелым течением заболевания отличались больные с инфекцией, обусловленной Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae, Klebsiela pneumoniae, Moraxella catarrhalis.

Для пациентов с осложненной формой АР было характерно наличие обильного роста одного или многих условно патогенных и/или патогенных микроорганизмов.

По результатам обследования выявлено, что наиболее часто выделенные микроорганизмы были чувствительны к антибиотикам цефалоспоринам II – III поколения, преимущественно (у 95.6% больных) к цефуроксиму.

В таблице № 13 представлен более, детальный видовой состав микрофлоры пациентов двух сравниваемых групп. Очевидно, что у больных с АР видовой состав микрофлоры более разнообразен и представлен 205

выделенными штаммами, в отличие от пациентов без атопии, у которых их было выделено в 2 раза меньше и составило 114 штаммов.

Таблица 13

Частота выявления различных микроорганизмов в назальном секрете больных АР

Виды микроорганизмовПациенты 1-2 группПациенты 3 группы
n%n%
1. S aureus58613542,2
2. S. Epidermidis2829,43238,5
3. Str. Millleri66,322,4
4. Str. Pneumoniae66,344,8
5. N. Subflava116ЗО
6. Corynobacterii spp.6963,12631,3
7.Klebsiella (pneumoniae, oxytoca)1144,8
8. Moraxella spp.66,344,8
9. C. Albicans11,011,2
10. Pseudomonas spp22,16ЗО

Таблица 14

Вид микроорганизмаКоличество штаммов
АРХИР
Гр+ кокки5. aureus4421
S. epidermidis3218
S. cohnii6
S. warneri1
S. haemolyticus14
S. schleiferi1
Общее количество штаммов Staphylococcus spp.8543
Str. Pneumoniae64
Str. Equi6
Str. Millleri52
Str. Bovis11
Str. Agalactiae31
Str. Dysgalactiae1•”
Другие Streptococcus (mitis, acidominimus, vestibularis и A.viridans)125
Общее количество штаммов Streptococcus spp.3413
Гр+ палочкиC. Pseudotuberculosis1011
C. pseudodiphthericum238

Данные риноскопии и рентгенологического и эндоскопического обследования полости носа, носоглотки и околоназальных пазух носа

Видовой состав микрофлоры слизистой носа у больных аденоидитом

Другие Corynebacterium (jeireum, rutschleeri, xerosis, reuale,amycolatum)97
Нокардиоформные актиномицеты (Actinomyces spp.,Nocardia spp., R. dentocariosa,P. Paurometabole)1810
Общее количество штаммов Corynebacterium spp.6026
C. albicans11
Общее количество гр+ культур18689
Гр- бактерииP. alcaligeues1
Acinetobacter ( hvoffi, juni, calcoaceticus)51
Moraxella spp.64
M. catarrhalis43
Neisseria (subflava, elongata, anereae, mucosa, polysacchareae)65
E. coli1
Klebsiella (pneumoniae, oxytoca)14
Enterobacter (aerogenos, cloaceae)22
P. mirabilis1
Общее количество гр- культур2521
Общее количество выделенных культур205114

Таким образом, проведенное исследование показало, что клинические особенности течения аденоидита у детей с АР отличают эпизодическая заложенность носа, симптомы, обусловленные гистаминолиберацией в полости носа (ринорея, зуд крыльев носа, чихание, стекловидный отек и цианоз слизистой оболочки); иммунологические особенности аденоидита у детей с АР отличают повышенное содержание эозинофилов в крови, носовом секрете, и ткани глоточной миндалины, повышенное содержание IgE и IgE — антител к ингаляционным бытовым аллергенам, а микропейзаж полости носа у детей с АР, осложненным аденоидитом, отличается высокой степенью колонизации полости носа и широким видовым составом представителей условно патогенной и патогенной микрофлоры.

Источник: https://webdissertation.com/uha-gorla-bolezni/mikroflora-polosti-nosa-bolnyih-115266.html

Состав микрофлоры слизистой оболочки носа при бактериальных

Микрофлора полости носа у больных с аденоидитом: Микробиологическое исследование полости носа провели 95 пациентам с

Многие исследователи считают, что одной из ведущих причин развития патологического процесса в слизистой оболочке полости носа и околоносовых пазух является бактериальный фактор, но есть и те, кто доказывает, что воспалительный процесс в области верхних дыхательных путей в 70% случаев имеет вирусную этиологию.

Результаты многолетних исследований показывают, что в настоящее время отмечается постепенное изменение видового состава возбудителей заболеваний ВДП.

Раньше в основном встречался обычный стафилококк, а теперь, все чаще встречается: Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae и Moraxella catarrhalis. Исследования же бактериального спектра при риносинусите показали, что чаще всего он представлен несколькими микробными возбудителями. Причем в 52% случаев это аэробные бактерии: стрептококки – 21%, Haemophilus influenzae – 16%, Pseudomonas aeroginosa – 15%, Staphylococcus aureus – 10%, Moraxella catarrhalis – 10%. В 48% случаев встречаются анаэробные бактерии, такие как: Peptostreptococcus spp., Bacteroides spp., Veillonella spp., Prevotella spp., Fusobacterium spp., Corynebacterium spp. Так же, в последнее время, в этиологии хронического синусита, все большую роль исследователи отводят грибковой флоре: Aspergillus spp., Phycomycetes spp. и Alternaria spp. Этиологическая роль нетипичных возбудителей в настоящее время активно исследуется и дискутируется. Считают, что анаэробы (анаэробные стрептококки, Bacteroides, Fusobacterium) вызывают воспалительный процесс в ОНП в среднем у 10% взрослых пациентов, как правило, при одонтогенных и осложненных синуситах. Есть сведения, что при остром фронтите рост анаэробов замечен у значительно большего числа больных. Значение внутриклеточных возбудителей в этиологии острого РС пока окончательно не выяснено. По мнению некоторых авторов, Mycoplasma pneumoniae и Chlamydophila pneumoniae могут быть источником воспаления ОНП в 8-25% случаев. Отмечено, что синуситы, вызванные данными возбудителями, часто встречаются при сопутствующей патологии нижних отделов дыхательных путей (хронический бронхит бронхиальная астма). Внутриклеточные возбудители могут длительно персистировать в клетках эпителия, лимфоглоточном кольце и обусловливать более тяжелое нестандартное течение заболевания. Острый бактериальный риносинусит (ОБРС) занимает одно из первых мест среди заболеваний ЛОР-органов по обращаемости за медицинской помощью. В подавляющем большинстве случаев он является осложнением острой респираторной вирусной инфекции (ОРВИ). Клиническая картина ОБРС во многом схожа с вирусным риносинуситом.

О присоединении бактериальной инфекции судят, если у пациента с ОРВИ не происходит существенного ослабления выраженности симптомов после 7-10 дней симптоматического лечения.

«Золотым» стандартом диагностики ОБРС является обнаружение бактерий в высокой концентрации (>105 КОЕ/мл) из содержимого околоносовых пазух, полученного при их пункции.

Не выявлено ни одного признака или симптома, который бы достоверно предсказывал наличие бактериальной инфекции и являлся бы диагностическим критерием при постановке диагноза, хотя сочетание нескольких признаков имеет достаточно высокую диагностическую ценность.

Наиболее частыми возбудителями ОБРС являются Str.pneumoniae, H.influenzae и Moraxella catarrhalis. Анализ различных исследований показал, что частота встречаемости этих возбудителей остается постоянной в течение последних десятилетий и составляет приблизительно 20-43% для Str.pneumoniae, 22-35% для H.influenzae и 2-10% для Moraxella catarrhalis. Другие стрептококки, анаэробы встречаются в небольшом числе случаев. По данным многих авторов наиболее часто встречающимися бактериальными агентами при гнойных синуситах являются стрепто-и стафилококки. Однако в настоящее время недостаточно изучены биологические свойства бактерий, способствующих переходу заболевания в хроническую форму, отсутствие эффективной терапии данной патологии, особенно направленные на подавление биологических свойств бактерий. У больных риносинуситами бактериальной природы обнаруживается наибольшее количество нейтрофильных гранулоцитов, которые, как известно, первыми вступают в воспалительные реакции, защищая организм от внедрения бактериальных агентов и развития инфекции. Изучением причин хронического течения и рецидивов риносинусита, а так же разработкой новых методов лечения и лекарственных препаратов сейчас занимается многие исследователи. Но, несмотря на это, отмечают все больший рост числа случаев осложненных, затяжных и рецидивирующих форм риносинусита и малую эффективностью антибактериальной терапии, часто это связано с назначением антибиотиков без учета их активности против основных возбудителей. Лечение при риносинусите заключается, прежде всего, в удалении гноя, это достигается хирургическим путем, а так же современной антибиотикотерапией и промыванием пазухи дезинфицирующими растворами. Однако такое лечение далеко не всегда гарантирует отсутствие осложнений, затяжного течения и рецидивов. По мнению некоторых исследователей, причиной служит стабилизация вируса внутри клетки с развитием персистентной инфекции. Другие считают, это связано с тем, что течение воспалительного процесса определяется не только причинными факторами, но так же состоянием индивидуальной иммунной реактивности и нарушением кинетики иммунного ответа. В свою очередь затяжное течение болезни и рецидивы сами оказывают выраженный иммунодепрессивный эффект на показатели как местного, так и системного иммунитета, что способствует быстрому распространению процесса и комбинированному поражению ЛОР органов. И хотя имеется множество работ в области изучения изменений системного иммунитета и коррекции этих изменений иммунотропными средствами количество случаев осложненных, затяжных и рецидивирующих форм риносинусита неуклонно растет. В результате исследования количественного и качественного состава микрофлоры слизистой оболочки носа у больных бактериальным риносинуситом доказано, что воспалительный процесс развивается при воздействии вирулентного возбудителя и несостоятельности местных и общих защитных сил организма. В группе больных БРС выявлен широкий диапазон микроорганизмов на слизистой оболочке носа (табл.3). При определении видовой принадлежности микроорганизмов, относящихся к стафилококкам, было установлено увеличение общей численности коагулазопозитивного – золотистого, а также коагулазонегативных – эпидермального и гемолитического стафилококков в исследуемой группе. Согласно данным литературы, Staphylococcus aureus является патогенной флорой и обладает выраженным сенсибилизирующим свойством. При его взаимодействии с организмом человека возникает реакция ГНТ и ГЗТ. Таблица 3

Микрофлора слизистой оболочки носа при бактериальном риносинусите

Также известно, что токсины, полученные из золотистого и эпидермального стафилококков, угнетают двигательную активность мерцательного эпителия; в наибольшей степени транспорт секрета, также при воздействии золотистого стафилококка наблюдается гемолиз эритроцитов. Повышение концентрации условно-патогенных бактерий в исследуемой группе говорит о снижении, как неспецифического иммунитета, так и общей иммунной резистентности организма, что документируется наличием отрицательных корреляционных взаимосвязей между представителями условно-патогенной микрофлоры и клеточным и гуморальным звеньями иммунной системы. В большей степени происходит снижение реактивности клеточного звена иммунитета. У больных БРС на слизистой оболочке носа выявлена повышенная концентрация энтерококков, появление которых в данном биотопе не является физиологической нормой. Лейко-Т-и лейко-В-клеточный индекс, а также концентрация IgА увеличивается при возрастании количества энтерококков. Защитным механизмом IgA является его способность прочно фиксироваться на поверхности клеток ресничного эпителия дыхательных путей и препятствовать заселению микроорганизмами эпителиальной выстилки. Уровень экспрессии CD95 снижается при увеличении количества штаммов золотистого стафилококка. Известно, что воздействие ?-токсина золотистого стафилококка на клетки проявляется в индукции апоптоза через систему каспаз. Апоптоз клеток под действием стафилококкового ?-токсина происходит независимо от рецепторов апоптоза, через систему каспаз по митохондриальному пути. Концентрация цитокинов увеличивается при повышении уровня бактерий на слизистой оболочке, при этом, снижение концентрации ИЛ-2 и ФНО? приводит к увеличению численности эпидермального стафилококка. Однако в патогенезе стафилококковой и стрептококковой инфекции большее значение имеют неспецифические механизмы защиты. Установлена положительная взаимосвязь между показателями функциональной активности нейтрофильных гранулоцитов и численностью стрептококков и отрицательная со стафилококками. В процессе эволюции стафилококки приобрели способность к угнетению фагоцитарной функции лейкоцитов крови путем блокирования опсонизирующих веществ, например комплемента и IgG, а также путем непосредственного токсического действия на фагоциты, при этом степень нарушения фагоцитарной защиты зависит от тяжести инфекционного процесса. В группе больных БРСобнаружено большое количество корреляционных взаимосвязей между видовым составом микрофлоры слизистой оболочки носа и уровнями активности метаболических ферментов в нейтрофильных гранулоцитах. При изучении обсемененности слизистой оболочки носа у больных БРС чаще всего встречались стафилококки (S.aureus, S.haemolyticus, S.epidermidis, S.cohnii), стрептококки (St.pneumoniae, St.haemolyticus), микрококки и нейссерии. При этом в группе БРС большой процент выявления приходится на энтерококки (E.faecalis), энтеробактерии, H.influenzae и M.catarrhalis. Наибольшая частота встречаемости приходилась на долю грамположительных кокков с явным преобладанием стафилококков, при этом ведущая роль принадлежала золотистому и эпидермальному стафилококкам. Таким образом, у больных БРС спектр колонизации слизистой оболочки носа включает разнообразные виды стафилококков, которые характеризуются выраженной антагонистической активностью, что подтверждают множественные отрицательные взаимосвязи между количеством энтеробактерий и стафилококков, в частности золотистым стафилококком, а также между стафилококками и микрококками. Положительная корреляция наблюдалась между видами стафилококков. Перенаселение микрофлорой слизистой оболочки носа при БРС способствует тому, что ее часть может спускаться из верхних отделов дыхательных путей в нижние – не свойственных данным микроорганизмам местах персистенции. Формирование новых микробных сообществ может изменять среду обитания и характер взаимоотношений между ассоциантами. Многие исследователи считают, что в таких условиях происходит отбор микропопуляций аутофлоры с повышенными вирулентными свойствами. Естественно, что при нарушении иммунореактивности организма для человека может представлять опасность не только носительство коагулазопозитивных стафилококков, но и возрастание численности коагулазонегативных видов стафилококков, поскольку обнаружено, что практически все виды, которые предположительно являются этиопатогенетическими агентами, способны продуцировать ферменты патогенности. Наиболее вероятными возбудителями могут быть коагулазоположительные стафилококки и гемолитический и эпидермальный среди коагулазоотрицательных стафилококков. Выделенные штаммы стафилококков у больных БРС обладают как патогенными так и персистентными свойствами в равных соотношениях. Острый риносинусит обычно развивается как осложнение острого ринита, обусловленного различными инфекционными агентами. Хронический риносинусит является следствием острого воспаления слизистой оболочки придаточных пазух носа; отягощающими факторами при этом могут являться хронические риниты, а также заболевания и гипертрофия миндалин лимфоглоточного кольца, искривления перегородки носа. Одним из важнейших этиологических факторов возникновения риносинусит являются грамположительные стафилококки, которые составляют условно-патогенную и патогенную микрофлору. В настоящее время в связи с широкой доступностью и нередко необоснованным назначением антибактериальных препаратов увеличивается количество антибиотикорезистентных штаммов стафилококков, что в свою очередь приводит к увеличению процента хронизации риносинусита и возникновению осложнений. Адекватность антибактериальной терапии острых и хронических синуситов является актуальной задачей в оториноларингологии. Результаты исследований показали, что подавляющую часть выделенной микрофлоры со слизистой оболочки носа в группах больных ОРС (острый риносинусит) и ХРС (хронический риносинусит) составляют бактерии, относящиеся к роду Staphylococcus. Полученные данные об обсемененности приведены в таблице 4. Обсемененность бактериями, относящихся к семейству Enterobacteriaceae и к роду Micrococcus была выше у больных ХРС. В группе больных ОРС напротив, возрастала численность бактерий рода Neisseria и Enterococcus. Анализ частоты встречаемости стафилококков у больных ОРС и ХРС показал, что чаще при ОРС обнаруживались виды S. aureus, S. epidermidis и S. warneri. При ХРС наибольший процент выявления приходился на штаммы таких видов как S.haemolyticus S.epidermidis, S.aureus. Таким образом, наиболее часто встречающимися видами стафилококков при ОРС и ХРС являлись S.aureus, S. epidermidis. Количественный анализ видового состава стафилококков у больных ХРС выявил увеличение КОЕ/мл штаммов S.cohnii (табл. 4). Тогда как при ОРС наблюдалось возрастание обсемененности таких штаммов стафилококков как S.haemolyticus, S.warneri и S.capitis. Таблица 4 Сравнительная характеристика микрофлоры слизистой оболочки носа больных острым и хроническим риносинуситом Микробный состав ХРС ОРС (%) (КОЕ/мл) (%) (КОЕ/мл) Enterobacteriaceae spp. 32 5,8Ч105 25 5,5Ч104 Nesseria spp. 10 1,6Ч106 18,5 3,7Ч105

Streptococcus spp. 4 5Ч105 12,5 2,5Ч107 P

Источник: https://med-books.info/sistemyi-zdravoohraneniya-49_organizatsiya/sostav-mikrofloryi-slizistoy-obolochki-nosa-41222.html

Мазок из зева, носа, горла норма, расшифровка – Частная детская поликлиника в Магнитогорске

Микрофлора полости носа у больных с аденоидитом: Микробиологическое исследование полости носа провели 95 пациентам с

Мазок из зева берут для проведения стандартного бактериологического исследования с целью изучения микробного состава и количественного соотношения микрофлоры носоглотки.

Это метод лабораторной диагностики, позволяющий выявить возбудителей инфекционно-воспалительных заболеваний верхних отделов респираторного тракта.

Для определения этиологии инфекции необходимо провести бактериологическое исследование отделяемого носа и зева на микрофлору.

Специалисты направляют больных с хроническим ринитом, тонзиллитом и фарингитом в микробиологическую лабораторию, где стерильным ватным тампоном отбирают биоматериал из носа и зева и проводят его исследование. По результатам анализа специалист определяет возбудителя патологии и его чувствительность к антибиотикам.

Причины и цели взятия мазка на микрофлору из зева и носа:

  • Диагностика ангины, вызванной бета-гемолитическим стрептококком и приводящей к развитию тяжелых осложнений — гломерулонефрита, ревматизма, миокардита.
  • Наличие в носоглотке золотистого стафилококка, провоцирующего образование фурункулов на коже.
  • Бактериологический посев клинического материала при воспалении носоглотки проводится с целью исключения дифтерийной инфекции.
  • Подозрение на менингококковую или коклюшную инфекцию, а также респираторные недуги.
  • Диагностика стенозирующего ларингита, мононуклеоза, абсцессов, расположенных рядом с миндалинами, включает однократное проведение анализа.
  • Лица, контактные с инфекционным больным, а также дети, поступающие в детский сад или школу, проходят профилактическое обследование с целью выявления бактерионосительства.
  • Полное обследование беременных женщин включает взятие мазка из зева на микрофлору.
  • Мазок из зева и носа на стафилококк с профилактической целью сдают все медицинские работники, воспитатели детских садов, повара и продавцы продуктовых магазинов.
  • Мазок из зева для определения клеточного состава отделяемого. Исследуемый материал наносят на специальное предметное стекло. Под микроскопом врач-лаборант подсчитывает количество эозинофилов и прочих клеток в поле зрения. Проводится исследование для определения аллергической природы заболевания.

В баклабораторию направляют больных для исследования материала из носоглотки с целью исключения или подтверждения конкретной инфекции. В направлении указывают микроорганизм, наличие которого необходимо подтвердить или опровергнуть.

Микрофлора носоглотки

На слизистой оболочке зева и носа обитает множество микроорганизмов, составляющих нормальную микрофлору носоглотки. Исследование отделяемого горла и носа показывает качественное и количественное соотношение микробов, обитающих в данном локусе.

Типы микроорганизмов, обитающих на слизистой носоглотки у здоровых людей:

  1. Бактероиды,
  2. Veillonella,
  3. Escherichia coli,
  4. Branhamella,
  5. Pseudomonas,
  6. Streptococcus matans,
  7. Neisseria meningitides,
  8. Klebsiella pneumonia,
  9. Эпидермальный стафилококк,
  10. Зеленящий стрептококк,
  11. Неболезнетворные нейссерии,
  12. Дифтероиды,
  13. Коринебактерии,
  14. Candida spp.,
  15. Haemophilis spp.,
  16. Actinomyces spp.

При патологии в мазке из зева и носа можно обнаружить такие микроорганизмы:

  • Бета-гемолитический стрептококк группы А,
  • Пневмококк,
  • S. aureus,
  • Коринобактерии дифтерии,
  • Haemophilis influenzae,
  • Neisseria meningitidis,
  • Candida albicans,
  • Бордетелла,
  • Листерия,
  • Branhamella catarrhalis,
  • Acinetobacter baumannii,
  • Энтеробактерии.

Подробнее о встречающемся в мазке стафилококке, его патогенности и стафилококковой инфекции рекомендуем почитать по ссылке.

Подготовка к анализу

Чтобы результаты анализа были максимально достоверными, необходимо правильно отобрать клинический материал. Для этого следует подготовиться.

За две недели до забора материала прекращают прием системных антибиотиков, а за 5-7 суток рекомендуют перестать использовать антибактериальные растворы, ополаскиватели, спреи и мази для местного применения. Сдавать анализ следует натощак. Перед этим запрещено чистить зубы, пить воду и жевать жвачку. В противном случае результат анализа может оказаться ложным.

Мазок из носа на эозинофилы сдают также натощак. Если человек поел, необходимо подождать как минимум два часа.

Взятие материала

Чтобы правильно взять материал из зева, пациенты откидывают голову назад и широко раскрывают рот. Специально обученный персонал лаборатории шпателем прижимает язык и собирает отделяемое глотки специальным инструментом – стерильным ватным тампоном. Затем извлекает его из полости рта и опускает в пробирку.

Пробирка содержит специальный раствор, которой предотвращает гибель микробов во время транспортировки материала. Пробирку необходимо доставить в лабораторию в течение двух часов с момента забора материала. Взятие мазка из горла – процедура безболезненная, но неприятная.

Прикосновение ватного тампона к слизистой глотки может спровоцировать рвотные позывы.

Чтобы взять мазок из носа, необходимо усадить пациента напротив и слегка запрокинуть ему голову. Перед анализом необходимо очистить нос от имеющейся слизи. Кожу ноздрей обрабатывают 70% спиртом.

Стерильный тампон вводят поочередно сначала в один, а затем в другой носовой ход, проворачивая инструмент и плотно прикасаясь к его стенкам.

Тампон быстро опускают в пробирку и направляют материал на микроскопическое и микробиологическое исследование.

Микроскопическое исследование

Исследуемый материал наносят на предметное стекло, фиксируют в пламени горелки, окрашивают по Граму и изучают под микроскопом с иммерсионным маслом. В мазке обнаруживают грамотрицательные или грамположительные палочки, кокки или коккобациллы, изучают их морфологические и тинкториальные свойства.

Микроскопические признаки бактерий — важный диагностический ориентир. Если в мазке находятся грамположительные кокки, расположенные скоплениями, напоминающими гроздья винограда, предполагают, что возбудителем патологии является стафилококк.

Если кокки окрашены по Граму положительно и располагаются в мазке цепочками или парами, возможно это стрептококки; грамотрицательные кокки — нейсерии; грамотрицательные палочки с закругленными концами и светлой капсулой — клебсиеллы, мелкие грамотрицательные палочки — эшерихии, синегнойные палочки.

Дальнейшее микробиологическое исследование продолжают с учетом микроскопических признаков.

Посев исследуемого материала

Каждый микроорганизм растет на своей «родной» среде с учетом рН и влажности. Среды бывают дифференциально-диагностическими, селективными, универсальными. Их основное предназначение – обеспечение питания, дыхания, роста и размножения бактериальных клеток.

Посев исследуемого материала необходимо проводить в стерильном боксе или ламинарном шкафу. Медработник должен быть одет в стерильную одежду, перчатки, маску и бахилы. Это необходимо для соблюдения стерильности в рабочей зоне. В боксе следует работать молча, аккуратно, обеспечивая личную безопасность, поскольку любой биологический материал считается подозрительным и заведомо заразным.

Мазок из носоглотки засевают на питательные среды и инкубируют в термостате. Спустя несколько суток на средах вырастают колонии, имеющие различную форму, размер и цвет.

Существуют специальные питательные среды, которые являются селективными для конкретного микроорганизма.

  1. Основной средой для микробов зева и носа является кровяной агар. Это высокочувствительная среда, содержащая питательные вещества для сапрофитных и патогенных бактерий. Пневмококки и золотистый стафилококк продуцируют гемолизины и вызывают гемолиз эритроцитов. Гемолитическая активность микробов — основной фактор патогенности, которым обладает большинство болезнетворных бактерий. Характер роста, цвет и зона гемолиза отличаются у микробов разных родов и видов.
  2. Среда Сабуро или тиогликолевая среда являются универсальными и подходят для широкого круга микробов.
  3. Желточно-солевой агар — элективная среда для выращивания стафилококков.
  4. Агар с гретой кровью – шоколадный агар. Это неселективная, обогащенная питательная среда, применяемая для выращивания патогенных бактерий. На этой среде растут гонококки, гемофильная палочка и возбудители гнойных бактериальных менингитов.
  5. Среда Эндо – дифференциально-диагностическая среда для культивирования энтеробактерий.
  6. Энтерококкагар — питательная среда для выделения энтерококков.

Материал втирают тампоном в среду на небольшой площадке размером 2 кв. см., а затем с помощью бактериологической петли штрихами рассевают по всей поверхности чашки Петри. Посевы инкубируют в термостате при определенной температуре. На следующий день посевы просматривают, учитывают количество выросших колоний и описывают их характер.

Пересевают отдельные колонии на селективные питательные среды для выделения и накопления чистой культуры. Микроскопическое изучение чистой культуры позволяет определить размер и форму бактерии, наличие капсулы, жгутиков, спор, отношение микроба к окрашиванию.

Идентифицируют выделенные микроорганизмы до рода и вида, при необходимости проводят фаготипирование и серотипирование.

Результат исследования

Результат исследования врачи-микробиологи выписывают на специальном бланке. Для расшифровки результата мазка из зева требуются значения показателей.

Название микроорганизма состоит из двух латинских слов, обозначающих род и вид микроба. Рядом с названием указывают количество бактериальных клеток, выраженное в особых колониеобразующих единицах.

После определения концентрации микроорганизма переходят к обозначению его патогенности – «флора условно-патогенная».

У здоровых людей на слизистой оболочке носоглотки живут бактерии, выполняющие защитную функцию. Они не доставляют дискомфорта и не вызывают развития воспаления. Под воздействием неблагоприятных эндогенных и экзогенных факторов количество этих микроорганизмов резко увеличивается, что приводит к развитию патологии.

В норме содержание сапрофитных и условно-патогенных микробов в носоглотке не должно превышать 103 – 104 КОЕ/мл, а патогенные бактерии должны отсутствовать.

Определить патогенность микроба и расшифровать анализ может только врач, обладающий специальными навыками и знаниями.

Доктор определит целесообразность и необходимость назначения больному противовоспалительных и антибактериальных препаратов.

После выявления возбудителя патологии и его идентификации до рода и вида переходят к определению его чувствительности к фагам, антибиотикам и противомикробным препаратам. Лечить заболевание горла или носа необходимо тем антибиотиком, к которому выявленный микроб максимально чувствителен.

результатов исследования мазка из зева

Варианты результатов исследования мазка из зева:

  • Отрицательный результат посева на микрофлору – возбудители бактериальной или грибковой инфекции отсутствуют. В этом случае причиной патологии являются вирусы, а не бактерии или грибы.
  • Положительный результат посева на микрофлору – наблюдается рост патогенных или условно-патогенных бактерий, способных вызвать острый фарингит, дифтерию, коклюш и прочие бактериальные инфекции. При росте грибковой флоры развивается кандидоз полости рта, возбудителем которого являются биологические агенты 3 группы патогенности – дрожжеподобные грибы рода Candida.

Микробиологическое исследование отделяемого зева и носа на флору позволяет определяют вид микробов и их количественное соотношение. Все патогенные и условно-патогенные микроорганизмы подлежат полной идентификации. Результат лабораторной диагностики позволяет врачу правильно назначить лечение.

: о мазке и стафилококке в нем, доктор Комаровский

Мнения, советы и обсуждение:

Источник:

Зачем проводят мазки из носа и зева, выявление инфекции и аллергии, определение возбудителя и методов его лечения

При некоторых инфекциях у детей, наличии длительного насморка, острого тонзиллита или сомнений в диагнозе врач назначает специфический анализ – мазок из носа и зева (горла) ребенка. Его проводят для определения природы инфекции (микробы или вирусы, грибковая инфекция), а в некоторых случаях он проводится для выявления аллергии (подозрение на поллиноз).

Когда показаны мазки из носа и глотки? Какие варианты анализов возможны? Микробные сообщества в норме и при патологиях Как подготовить ребенка к забору мазков? Методика забора мазков у детей: помощь родителей Проведение микроскопического анализа Посевы мазков и их результаты Расшифровка мазка из зева, носа, горла

Подобный мазок назначает ЛОР-врач, педиатр или врачи других специальностей, когда необходимо провести стандартное или прицельное бактериологическое исследование. Оно поможет выявить состав нормальной микрофлоры носоглотки, наличие условно-патогенных и опасных микробов, а также по результатам посева и определения чувствительности опасных возбудителей к антибиотикам, подобрать лечение. 

Мазки могут быть показаны детям с острыми респираторными инфекциями или наличием хронических патологий – ринитов, фарингитов, аденоидита, тонзиллитов. Чтобы результаты были наиболее точными и помогли в лечении ребенка, необходимо правильно подготовиться к исследованию и знать методику забора.

Когда показаны мазки из носа и глотки?

Мазки назначаются не всем категориям детей, а только некоторым, имеющим определенные заболевания или подозрения на них, либо проходящим профилактические осмотры, находящимся на карантине.

Забор мазков будет показан при:

Также забор мазков проводят у детей, которые контактировали с другими малышами, болеющими опасными инфекциями (дифтерия, менингококковая инфекция, коклюш). Необходимо проведение подобных мазков у тех малышей, которые оформляются в детские сады или школы с целью исключения носительства опасных микробов (бактерионосительство и бактериовыделение).

Какие варианты анализов возможны?

Наиболее часто мазки из носа и зева проводят для того, чтобы определить состав микробной флоры носоглотки и выявить среди них опасные патогенные штаммы.

С этой целью забранный стерильными инструментами материал отправляют в баклаборатории с целью посева их на питательные среды, выращивания колоний и определения их природы, а также при обнаружении опасных микробов, проведения тестов на чувствительность к антибиотикам.

Обратите внимание

В некоторых случаях делается прицельный анализ на выявление конкретного возбудителя, о чем указывается в сопроводительном направлении от врача (мазок на BL, определение коклюша, стафилококка).

Особым вариантом исследования будет забор мазков-отпечатков с целью определения состава клеток слизистых носа.

Полученные со слизистой материалы помещаются на предметное стекло, чтобы потом их мог прицельно изучить лаборант. Обычно ведется подсчет эозинофилов и других клеток, попадающих в поле зрения микроскопа.

Это нужно для выявления аллергической предрасположенности и респираторных аллергозов

Микробные сообщества в норме и при патологиях

Слизистая оболочка носоглотки с рождения ребенка активно заселяется сапрофитной (безобидной) и условно-патогенной флорой. При инфекциях могут также обнаруживаться и патогенные виды микробов.

При изучении мазков проводят как качественное определение состава микробов, так и подсчитывают количество тех или иных групп, обитающих как в области носа, так и горла.

Есть целая группа микробов, которые могут быть обнаружены в носу и глотке, и никак не вредят ребенку, врачи их прекрасно знают.

При патологиях могут выявляться совершенно иные типы бактерий – пневмо-, стафило- и стрептококки, дифтиретические бактерии, грибки и много иных возбудителей.

В бланке с результатами указывают их наличие, тип микроба и его количественные характеристики.

Если это патогенные, опасные микробы и необходимо решение о лечении, проводится определение чувствительности возбудителей к антибиотикам с указанием групп препаратов.

Как подготовить ребенка к забору мазков?

Никакой особой сложности и боли забор мазков не представляет, хотя процедура может быть немного неприятна малышу. Чтобы результаты показали максимальную достоверность, важно правильно собрать материалы для исследования.

Как минимум за две недели отменяется прием антибиотиков внутрь, а за неделю до проведения мазков отменяют все местные препараты в виде полосканий, растворов и спреев, мазей и прочих форм.

Важно

Анализ сдается утром натощак, нельзя перед забором мазков чистить зубы, жевать жевательные резинки или пить жидкости, иначе результаты могут быть существенно искажены.

Если речь идет о мазках из носа на определение эозинофилов (аллергии) их также забирают натощак, или через два часа после еды. До их забора не применяют спреи для носа, антигистаминные препараты и промывание солевыми растворами.

Методика забора мазков у детей: помощь родителей

Чтобы правильно собрать достаточный объем материала, важно правильно держать ребенка при процедуре. Если это младенец, его укладывают на кушетку, родители фиксируют тело и головку. Если это дети постарше, их сажают на колени, обхватывая своими ногами их ноги, одной рукой держа за грудь, второй — в области лба фиксируя голову, прижатую к своей груди.

Медсестра или врач при помощи шпателя прижимает язык и специальной стерильной палочкой забирает материал для исследования из глотки. Это самая неприятная часть процедуры.

Затем палочку  ваткой на конце помещают в пробирку со стерильным питательным раствором.

Важно держать ребенка крепко, чтобы он не дергался, и персонал не прикасался к корню языка, это провоцирует позывы к рвоте.

Мазок из носа берется аналогичной палочкой со стерильной ватой на кончике путем введения ее в носовые ходы, и проворачивают его в носовых ходах, плотно прижимая к слизистым. Затем палочку также помещают в пробирку со стерильным раствором и доставляют в лабораторию для исследования. Перед забором мазков рекомендует высморкать ребенку нос.

Проведение микроскопического анализа

После доставки материала в лабораторию его наносят пипеткой на предметное стекло, проводят необходимые этапы обработки препаратов, затем помещают под микроскоп, где лаборант их изучает. Проводят выявление и идентификацию, подсчет микробных тел, обнаруженных в препарате.

Можно таким образом определить кокковую флору, бациллярную, грамотрицательные палочки ил положительные. По определенным характеристикам микробов в мазках уже можно сделать предварительные заключения о природе инфекции. Но дополнить и уточнить ее можно только по результатам посевов.

Посевы мазков и их результаты

Рост тех или иных групп микробов происходит на своей питательной среде, это иногда помогает уже сразу поставить диагноз.

На выращивание колоний в среднем уходит от 1-2 до 7 суток и более, в зависимости от возбудителя.

По внешнему виду выраженных колоний микробов, а также набору определенных свойств лаборанты идентифицируют возбудителя, а также проводят исследование их чувствительности к тем или иным антибиотикам.

Результаты обоих исследований лаборанты пишут или печатают на специальных бланках, чтобы расшифровать нормы и патологии, врачам они дополнительно указывают нормы для данной лаборатории, вида анализа и питательной среды.

Микробы в анализе могут быть отнесены к трем группам:

  • Сапрофитные, то есть безопасные, входящие в состав нормальной привычной микрофлоры.
  • условно-патогенные, относящиеся к группе тех, что могут прибывать на слизистых, но при особых условиях грозят вызывать патологии.
  • патогенные, этих бактерий у здоровых детей быть не должно, они однозначно опасны и вызывают инфекции.

Важно

Если в отношении патогенных микробов все понятно, то с условно-патогенными и необходимостью их лечения определяется врач. Опасное их количество обычно превышает 103-104 КОЕ/мл.

Для патогенных микробов также будет отдельно указано в графе чувствительность к антибиотикам тех или иных групп, наиболее распространенных в практике.

Расшифровка мазка из зева, носа, горла

Возможно получение двух вариантов результата по данным посева на флору из носа и глотки:

  • Отрицательные результаты. Если это здоровый ребенок, без признаков респираторных патологий и анализ проводился в рамках профилактического обследования, на это все и завершается. Если же ребенок болен, делается вывод о том, что причинами патологии стали вирусы или неинфекционные поражения.
  • положительные результаты с выявлением роста условно-патогенных или патогенных микробов, способных к провокации воспалительных поражений носоглотки. Помимо микробных, возможно также выявление роста и грибковых возбудителей. По этим данным подбирается лечение и проводится уже врачом.

Парецкая Алена, педиатр, медицинский обозреватель

12,471  3 

(56 голос., 4,07

Источник: https://kinder-medcentr.ru/prochee/mazok-iz-zeva-nosa-gorla-norma-rasshifrovka.html

Medic-studio
Добавить комментарий